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上海古朵生物科技有限公司
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生物發(fā)光是用熒光素酶基因標記細胞或DNA

時間:2020/1/9閱讀:778
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  活體光學成像(Optical in vivo Imaging)主要采用生物發(fā)光(bioluminescence)技術與熒光(fluorescence)技術十大行動。生物發(fā)光是用熒光素酶(Luciferase)基因標記細胞或DNA領域,今天進一步提升,生物發(fā)光標記物可以標記到任何一種基因上協調機製,使對基因功能的全面細致研究成為現實重要的角色。而熒光技術則采用熒光報告基團(GFP、RFP向好態勢,Cyt及dyes等)進行標記平臺建設,利用熒光蛋白在外源光源或是內源發(fā)光照射下被激發(fā)產生的熒光作為檢測信號服務機製。研究人員能夠利用一套非常靈敏的光學檢測儀器直接監(jiān)控活體生物體內的細胞活動和基因行為。
 
  該技術可被廣泛應用于標記細胞或基因的示蹤及檢測使用;基因治療(gene therapy)在活體動物體內直接的觀察和檢測大幅拓展;基因組、蛋白組學更加堅強、藥學及生物技術在活體動物內的研究與時俱進;藥物及化學合成藥物的藥物代謝及毒理學監(jiān)測;食品菌落生長成像初步建立;皮膚醫(yī)學中皮膚疾病的體內成像綜合運用;法醫(yī)鑒定;微孔板成像的方法,例如:免疫分析實事求是、報告基因、基因探針和嗜菌作用分析等落到實處;熒光團的體內成像服務水平,例如:Alzheimer疾病研究中結合嗪的β-淀粉沉淀物分析;轉基因植物(transgenic plant)中通過報告基因對生理周期節(jié)奏的研究技術創新;凝膠成像分析等等處理方法。
 
  實驗步驟
 
  1. 用熒光色素DiD標記間充質干細胞
 
  1) 先用*消化待標記材料,使之成為一定密度的懸浮液持續向好;
 
  2) 從細胞培養(yǎng)箱中取出間充質干細胞活動上,吸取含原有培養(yǎng)基的細胞懸浮液進行標記;
 
  3) 用10 ml Mg/Ca-free PBS (不含鈣鎂離子的磷酸緩沖液)清洗細胞進一步推進,吸去PBS導向作用,鈣鎂離子會影響*的活性,必須小心應用的選擇;
 
  4) 加入預熱的0.05% *液十大行動,加液量以T75型瓶為例,每瓶加5ml背景下,確保瓶的表面被*覆蓋綜合措施;
 
  5) 在細胞培養(yǎng)箱中37° C 孵育約 5 分鐘;
 
  6) 然后在顯微鏡下確認細胞已經*分散基本情況,如果有細胞貼壁情況現場,輕拍若干次或延長孵育時間直至酶解消化*成功;
 
  7) 加入等量含 10% FCS的培養(yǎng)基中和*力量;
 
  8) 用移液器反復吸取幾次確保細胞均勻分散我有所應;
 
  9) 然后移取細胞懸浮液至15ml 已滅菌的有蓋聚丙烯離心管中;
 
  10) 400 RCF離心5 分鐘深入實施;
 
  11) 小心移去上清液至關重要,不要擾動細胞發展空間;
 
  12) 將細胞重新懸浮于DMEM 并進行計數;
 
  13) 需要待標記細胞在無血清DMEM溶液中的密度應為1x106/ml 有所應;
 
  14) 每ml細胞懸浮液加入5 μL DiD 染色液足了準備;
 
  15) 用移液器將染色液與細胞懸浮液混合均勻;
 
  16) 在6孔低附著性細胞板上37°C 孵育20分鐘著力提升;
 
  17) 孵育*后移取細胞懸浮液至15ml 已滅菌的有蓋聚丙烯離心管中深刻內涵;
 
  18) 400 RCF離心5 分鐘;
 
  19) 小心移去染色液融合,不要擾動細胞交流等;
 
  20) 用PBS清洗細胞,用移液器反復吸取幾次確保細胞均勻分散規劃;
 
  21) 重復洗三次提高;
 
  22) 細胞重新計數并用臺盼藍染色法檢測細胞活性;
 
  23) 進行活細胞成像進入當下。
 
  2. 用熒光色素ICG標記人胚胎干細胞
 
  1) 必須先準備好*溶液(血容量紮實、心輸出量、肝功能測定劑)作為對照品新體系,然后使之與轉染試劑*(抗凝血作用)混合投入力度;
 
  2) 測出1ml*溶液的活力,然后在100 μL DMSO中溶解ICG不難發現;
 
  3) 向混合物中加入 400 μL Dulbecco的改良Eagles 培養(yǎng)基 (DMEM加10% 胎牛血清)貢獻法治,震蕩均勻,*溶液終濃度為2mg/ml發展需要;
 
  4) 加入轉染試劑*攻堅克難,*作為對照品的載體,使之能夠有效進入細胞顯示;
 
  5) 在300 μL ICG 和 300 μL 無血清Dulbecco改良 Eagles 培養(yǎng)基中混入 5 μL 硫酸*溶液流程,使之終濃度為 10mg/ml,勃勃生機;
 
  6) 震蕩5分鐘使之形成復合物助力各業,標記溶液制備完畢;
 
  7) 從 hESC 10mm Petri 培養(yǎng)皿中移去原有培養(yǎng)基提供有力支撐;
 
  8) 加入5ml預熱的 DMEM應用;
 
  9) 加入制備好的*/ICG 溶液, 37°C下孵育1h品率;
 
  10) 孵育*后移去染色液相貫通;
 
  11) 用5 ml PBS漂洗培養(yǎng)皿以清除染色液;
 
  12) 移去 PBS 再加入 5ml 0.25 % *液,37°C下孵育5分鐘使之酶解集聚效應,適當震搖培養(yǎng)皿效果會更好集成;
 
  13) 用移液器反復吸取幾次確保細胞均勻分散重要手段;
 
  14) 加入等量含 10% KSR的培養(yǎng)基中和*互動講;
 
  15) 然后移取細胞懸浮液至15ml 已滅菌的有蓋聚丙烯離心管中,400 RCF離心5 分鐘像一棵樹;
 
  16) 在全培養(yǎng)基中懸浮細胞過程中;
 
  17) 如果還有細胞團塊,可以移去原有培養(yǎng)基用10ml預熱的全ESC培養(yǎng)基重新懸浮細胞能運用,重復酶解再離心達到;
 
  18) 在這一點上,鼠源飼喂細胞需從hESCs中分離不可缺少;
 
  19) 然后將細胞懸浮液移至涂布瓊脂的10 cm 培養(yǎng)皿中蓬勃發展;
 
  20) 37°C 孵育 45 分鐘,注意不要晃動培養(yǎng)皿積極回應,如此鼠源飼喂細胞會貼壁而干細胞保持懸钢匾?。?br /> 
  21) 從Petri 培養(yǎng)皿中移出已標記的單細胞人胚胎干細胞懸浮液多種場景;
 
  22) 細胞重新計數并用臺盼藍染色法檢測細胞活性多元化服務體系;
 
  23) 進行活細胞成像。

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