Boivin和Messrobeanu于1935年，將活菌或經(jīng)冷凍干燥的大腸桿菌溝通協調，在4℃條件下與0.25N的三氯醋酸共同振蕩或劇烈攪拌，將細菌細胞裂解體系，使LPS分子從破潰的細胞外膜上游離出來保障性。離心后取上清液經(jīng)濃縮后，加2倍體積的冷凍乙醇責任製，將生成的沉淀物溶解十分落實、濃縮后冷凍干燥，即得到LPS干粉規則製定。此法提取的LPS含有10%左右的菌體蛋白製造業，這些蛋白質(zhì)可影響LPS的理化性質(zhì)和生物學活性。

（二）酚-水法

wesphal和luederitz于1952年為分離含蛋白質(zhì)較低的LPS而建立的方法關規定，以后被廣泛應用于水溶性S-LPS的提取發展基礎。具體過程為：在細菌的水溶液中，加入等量90%的酚將細胞裂解建強保護，使內(nèi)毒素分子從破潰的細胞外膜上游離出來同期。68℃，振蕩10～15min后使命責任，冷卻效果、離心，收集富含LPS的水相合規意識，并反復用水萃取3～5次密度增加，然后將水相濃縮、冷凍于燥創新內容，得到粗提的LPS機遇與挑戰，將粗制品溶解于水，高速離心（100000g善於監督，2～3h）不負眾望，得到顆粒狀LPS后再溶于水中冷凍干燥。此法提取的LPS純度較高調解製度，蛋白質(zhì)含量為1%~3%精準調控。

由Galanos設計的提取R-LPS的方法。預先經(jīng)乙醇、丙酮解決、乙-醚脫脂后的干燥菌預期，用90%苯-酚﹑氯仿及石油醚按2∶5∶8所組成的混合提取液提取2～3次，取酚相幅度，得到LPS和孔蛋白（porin）提取液結構，用減壓法去除溶媒，加水形成沉淀貢獻，并洗滌3～5次規模最大，然后再用80%苯-酚復溶，減壓干燥統籌，得到的LPS粗制品溶于水最深厚的底氣，超速離心取沉淀，即得到LPS純品振奮起來。此法純化得到的LPS品質，不含核酸和多聚糖，蛋白質(zhì)含量可控制在1%以下深入各系統。

由Morrison等于1975年設計解決問題。水-丁醇法較酚法簡便，溫和作用，適用于提取大腸桿菌和沙門菌的LPS相互配合；所得制品含蛋白量約1%。但此方法仍存在一些不足著力增加，由于丁醇不能滅活制品中酶類相對簡便，導致在制備過程和儲存時，Lipid A常發(fā)生降解流程。

二合作、純化
 

（一）離子交換層析法

利用陽離子樹脂非特異性的吸附帶負電荷LPS的性質(zhì)，將LPS從流動相中分離純化出來助力各業。

利用多-粘-菌-素-B特異性結(jié)合LPS的特性極致用戶體驗，將多-粘-菌-素-B包被于聚丙烯胺樹脂等高分子聚合物的表面，制成特異性結(jié)合LPS的層析柱質生產力，即可對LPS進行親和層析法純化適應性強。

通常情況下，未提純的LPS溶液中存在大量的小分子帶電物質(zhì)先進的解決方案，如Mg2+ 拓展、Ca2+和少量的Fe2+ 、A13+宣講活動、Zn2+不斷進步、Na+等離子及乙醇胺工藝技術、腐胺﹑精胺、亞精胺及尸胺等小分子量多胺規模。它們中和LPS分子上帶負電荷的磷酸基團近年來，使得本可以用帶電荷的吸附劑將LPS除去的效果明顯降低。電透析便是通過離子交換的方法進行LPS純化的發展目標奮鬥。其原理就是將很多的陰/陽離子交換膜交錯地串聯(lián)在一起技術先進，電解質(zhì)溶液則在膜間流動，兩側(cè)施加直流電之后溶液中陽離子（如無機陽離子延伸、生物堿等）向陰極移動而陰離子（如無機陰離子認為、有機酸等）向陽極移動。其中陰離子可順利通過陰離子膜新趨勢，但再往前移動時卻被鄰近的陽離子膜擋住反應能力。同樣，陽離子也可以順利地通過陽離子膜而無法通過陰離子膜凝聚力量。中性化合物及高分子化合物則留在透析液中有所提升，最終得到純化的提取物（圖2-6）聽得進。

由于提取的LPS中含有較多帶正電荷的雜質(zhì)新的力量，因此在LPS的電透析過程中可發(fā)現(xiàn)陰極的pH值升高，陽極的pH值變化不明顯的現(xiàn)象便利性。電透析過程中LPS溶液的pH值常有一定程度的下降全面展示，同時由于有穩(wěn)定LPS多聚體功能的Mg2+ 、Ca2+等離子成分被除去深刻認識，LPS多聚體變?yōu)閱误w而發(fā)生沉淀核心技術。為避免此現(xiàn)象，需用NaOH或三乙胺將其中和到pH 7.0左右主動性，使其形成中性的創造性、高水溶性的LPS鈉鹽和LPS三乙胺鹽而重新溶解。電透析結(jié)束時基礎，LPS一般為酸性產(chǎn)物性能，此酸性LPS在水中的溶解度極低，可直接進行凍干處理對外開放，-4～-20℃低溫保存技術創新，每次使用前可用不同的堿中和轉(zhuǎn)化成所需要的LPS鹽。

根據(jù)LPS與核酸片段在分子量上的差異資料，可用超速離心法廣泛應用、電泳法等方法將其去除。